VCF格式:Vriant Call Format.关于其详细描述,请见GATK的FAQ:How should I interpret VCF files produced by the GATK?
1. 什么是VCF?
CVF是用于描述SNP,INDEL和SV结果的文本文件。在GATK软件中得到最好的支持,当然SAMtools得到的结果也是CVF格式,和GATK的CVF格式有点差别。
2. VCF的主体结构
先给出一个VCF文件的范例:
##fileformat=VCFv4.0 ##FILTER=<ID=LowQual,Description="QUAL < 50.0"> ##FORMAT=<ID=AD,Number=.,Type=Integer,Description="Allelic depths for the ref and alt alleles in the order listed"> ##FORMAT=<ID=DP,Number=1,Type=Integer,Description="Read Depth (only filtered reads used for calling)"> ##FORMAT=<ID=GQ,Number=1,Type=Float,Description="Genotype Quality"> ##FORMAT=<ID=GT,Number=1,Type=String,Description="Genotype"> ##FORMAT=<ID=PL,Number=3,Type=Float,Description="Normalized, Phred-scaled likelihoods for AA,AB,BB genotypes where A=ref and B=alt; not applicable if site is not biallelic"> ##INFO=<ID=AC,Number=.,Type=Integer,Description="Allele count in genotypes, for each ALT allele, in the same order as listed"> ##INFO=<ID=AF,Number=.,Type=Float,Description="Allele Frequency, for each ALT allele, in the same order as listed"> ##INFO=<ID=AN,Number=1,Type=Integer,Description="Total number of alleles in called genotypes"> ##INFO=<ID=DB,Number=0,Type=Flag,Description="dbSNP Membership"> ##INFO=<ID=DP,Number=1,Type=Integer,Description="Total Depth"> ##INFO=<ID=DS,Number=0,Type=Flag,Description="Were any of the samples downsampled?"> ##INFO=<ID=Dels,Number=1,Type=Float,Description="Fraction of Reads Containing Spanning Deletions"> ##INFO=<ID=HRun,Number=1,Type=Integer,Description="Largest Contiguous Homopolymer Run of Variant Allele In Either Direction"> ##INFO=<ID=HaplotypeScore,Number=1,Type=Float,Description="Consistency of the site with two (and only two) segregating haplotypes"> ##INFO=<ID=MQ,Number=1,Type=Float,Description="RMS Mapping Quality"> ##INFO=<ID=MQ0,Number=1,Type=Integer,Description="Total Mapping Quality Zero Reads"> ##INFO=<ID=QD,Number=1,Type=Float,Description="Variant Confidence/Quality by Depth"> ##INFO=<ID=SB,Number=1,Type=Float,Description="Strand Bias"> ##INFO=<ID=VQSLOD,Number=1,Type=Float,Description="log10-scaled probability of variant being true under the trained gaussian mixture model"> ##UnifiedGenotyperV2="analysis_type=UnifiedGenotyperV2 input_file=[TEXT CLIPPED FOR CLARITY]" #CHROM POS ID REF ALT QUAL FILTER INFO FORMAT NA12878 chr1 873762 . T G 5231.78 PASS AC=1;AF=0.50;AN=2;DP=315;Dels=0.00;HRun=2;HaplotypeScore=15.11;MQ=91.05;MQ0=15;QD=16.61;SB=-1533.02;VQSLOD=-1.5473 GT:AD:DP:GQ:PL 0/1:173,141:282:99:255,0,255 chr1 877664 rs3828047 A G 3931.66 PASS AC=2;AF=1.00;AN=2;DB;DP=105;Dels=0.00;HRun=1;HaplotypeScore=1.59;MQ=92.52;MQ0=4;QD=37.44;SB=-1152.13;VQSLOD= 0.1185 GT:AD:DP:GQ:PL 1/1:0,105:94:99:255,255,0 chr1 899282 rs28548431 C T 71.77 PASS AC=1;AF=0.50;AN=2;DB;DP=4;Dels=0.00;HRun=0;HaplotypeScore=0.00;MQ=99.00;MQ0=0;QD=17.94;SB=-46.55;VQSLOD=-1.9148 GT:AD:DP:GQ:PL 0/1:1,3:4:25.92:103,0,26 chr1 974165 rs9442391 T C 29.84 LowQual AC=1;AF=0.50;AN=2;DB;DP=18;Dels=0.00;HRun=1;HaplotypeScore=0.16;MQ=95.26;MQ0=0;QD=1.66;SB=-0.98 GT:AD:DP:GQ:PL 0/1:14,4:14:60.91:61,0,255
从范例上看,VCF文件分为两部分内容:以“#”开头的注释部分;没有“#”开头的主体部分。
值得注意的是,注释部分有很多对VCF的介绍信息。实际上不需要本文章,只是看看这个注释部分就完全明白了VCF各行各列代表的意义。我们先讲VCF文件主题部分的结构,如下所示:
[HEADER LINES] #CHROM POS ID REF ALT QUAL FILTER INFO FORMAT NA12878 chr1 873762 . T G 5231.78 PASS [ANNOTATIONS] GT:AD:DP:GQ:PL 0/1:173,141:282:99:255,0,255 chr1 877664 rs3828047 A G 3931.66 PASS [ANNOTATIONS] GT:AD:DP:GQ:PL 1/1:0,105:94:99:255,255,0 chr1 899282 rs28548431 C T 71.77 PASS [ANNOTATIONS] GT:AD:DP:GQ:PL 0/1:1,3:4:25.92:103,0,26 chr1 974165 rs9442391 T C 29.84 LowQual [ANNOTATIONS] GT:AD:DP:GQ:PL 0/1:14,4:14:60.91:61,0,255
以上去掉了头部的注释行,只留下了代表每一行意义的注释行。主体部分中每一行代表一个Variant的信息。
3. 怎么解释Variation
CHROM 和 POS:代表参考序列名和variant的位置;如果是INDEL的话,位置是INDEL的第一个碱基位置。
ID:variant的ID。比如在dbSNP中有该SNP的id,则会在此行给出;若没有,则用’.’表示其为一个novel variant。
REF 和 ALT:参考序列的碱基 和 Variant的碱基。
QUAL:Phred格式(Phred_scaled)的质量值,表示在该位点存在variant的可能性;该值越高,则variant的可能性越大;计算方法:Phred值 = -10 * log (1-p) p为variant存在的概率; 通过计算公式可以看出值为10的表示错误概率为0.1,该位点为variant的概率为90%。
FILTER:使用上一个QUAL值来进行过滤的话,是不够的。GATK能使用其它的方法来进行过滤,过滤结果中通过则该值为”PASS”;若variant不可靠,则该项不为”PASS”或”.”。
INFO: 这一行是variant的详细信息,内容很多,以下再具体详述。
FORMAT 和 NA12878:这两行合起来提供了’NA12878’这个sample的基因型的信息。’NA12878’代表这该名称的样品,是由BAM文件中的@RG下的 SM 标签决定的。
4. 基因型信息
chr1 873762 . T G [CLIPPED] GT:AD:DP:GQ:PL 0/1:173,141:282:99:255,0,255 chr1 877664 rs3828047 A G [CLIPPED] GT:AD:DP:GQ:PL 1/1:0,105:94:99:255,255,0 chr1 899282 rs28548431 C T [CLIPPED] GT:AD:DP:GQ:PL 0/1:1,3:4:25.92:103,0,26
看上面最后两列数据,这两列数据是对应的,前者为格式,后者为格式对应的数据。
GT:样品的基因型(genotype)。两个数字中间用’/’分开,这两个数字表示双倍体的sample的基因型。0 表示样品中有ref的allele; 1 表示样品中variant的allele; 2表示有第二个variant的allele。因此: 0/0 表示sample中该位点为纯合的,和ref一致; 0/1 表示sample中该位点为杂合的,有ref和variant两个基因型; 1/1 表示sample中该位点为纯合的,和variant一致。
AD 和 DP:AD(Allele Depth)为sample中每一种allele的reads覆盖度,在diploid中则是用逗号分割的两个值,前者对应ref基因型,后者对应variant基因型; DP(Depth)为sample中该位点的覆盖度。
GQ:基因型的质量值(Genotype Quality)。Phred格式(Phred_scaled)的质量值,表示在该位点该基因型存在的可能性;该值越高,则Genotype的可能性越大;计算方法:Phred值 = -10 * log (1-p) p为基因型存在的概率。
PL:指定的三种基因型的质量值(provieds the likelihoods of the given genotypes)。这三种指定的基因型为(0/0,0/1,1/1),这三种基因型的概率总和为1。和之前不一致,该值越大,表明为该种基因型的可能性越小。 Phred值 = -10 * log (p) p为基因型存在的概率。
5. VCF第8列的信息
该列信息最多了,都是以 “TAG=Value”,并使用”;”分隔的形式。其中很多的注释信息在VCF文件的头部注释中给出。以下是这些TAG的解释
AC,AF 和 AN:AC(Allele Count) 表示该Allele的数目;AF(Allele Frequency) 表示Allele的频率; AN(Allele Number) 表示Allele的总数目。对于1个diploid sample而言:则基因型 0/1 表示sample为杂合子,Allele数为1(双倍体的sample在该位点只有1个等位基因发生了突变),Allele的频率为0.5(双倍体的sample在该位点只有50%的等位基因发生了突变),总的Allele为2; 基因型 1/1 则表示sample为纯合的,Allele数为2,Allele的频率为1,总的Allele为2。
DP:reads覆盖度。是一些reads被过滤掉后的覆盖度。
Dels:Fraction of Reads Containing Spanning Deletions。进行SNP和INDEL calling的结果中,有该TAG并且值为0表示该位点为SNP,没有则为INDEL。
FS:使用Fisher’s精确检验来检测strand bias而得到的Fhred格式的p值。该值越小越好。一般进行filter的时候,可以设置 FS < 10~20。
HaplotypeScore:Consistency of the site with at most two segregating haplotypes
InbreedingCoeff:Inbreeding coefficient as estimated from the genotype likelihoods per-sample when compared against the Hard-Weinberg expectation
MLEAC:Maximum likelihood expectation (MLE) for the allele counts (not necessarily the same as the AC), for each ALT allele, in the same order as listed
MLEAF:Maximum likelihood expectation (MLE) for the allele frequency (not necessarily the same as the AF), for each ALT alle in the same order as listed
MQ:RMS Mapping Quality
MQ0:Total Mapping Quality Zero Reads
MQRankSum:Z-score From Wilcoxon rank sum test of Alt vs. Ref read mapping qualities
QD:Variant Confidence/Quality by Depth
RPA:Number of times tandem repeat unit is repeated, for each allele (including reference)
RU:Tandem repeat unit (bases)
ReadPosRankSum:Z-score from Wilcoxon rank sum test of Alt vs. Ref read position bias
STR:Variant is a short tandem repeat